果糖 1,6-二磷酸醛縮酶（Fructose 1,6 bisphosphate aldolase，FDA）試劑盒說明書

分光光度法 50 管/48 樣

果糖1,6-二磷酸醛縮酶試劑盒 光合系列

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

植物葉綠體中果糖 1,6-二磷酸醛縮酶是光合作用中參與calvin 循環的重要酶。催化果糖 1,6-二磷酸和景天庚酮糖 1,7-二磷酸的合成反應，在各種逆境脅迫下表現不同的響應。

測定原理：

果糖 1,6-二磷酸醛縮酶催化果糖 1,6-二磷酸生成 3-磷酸甘油醛和磷酸二羥丙酮，在磷酸丙糖異構酶和 α-磷酸甘油脫氫酶作用下催化 NADH 和磷酸二羥丙酮生成 NAD 和α-磷酸甘油，340nm 處吸光值的變化可反映果糖 1,6-二磷酸醛縮酶活性的高低。

組成：

試劑二：粉劑×1 瓶，-20℃避光保存。臨用前加 5ml 蒸餾水充分溶解；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

試劑三：粉劑×1 瓶，-20℃避光保存。臨用前加 5 ml 蒸餾水充分溶解；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

試劑四：粉劑×1 瓶，-20℃避光保存。臨用前加 5 ml 蒸餾水充分溶解；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

試劑五：液體×1 瓶，4℃避光保存；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

自備儀器和用品：

天平、低溫離心機、震蕩儀、研缽、紫外分光光度計、1 ml 石英比色皿。

酶液提取：

①總FDA 酶提取：建議稱取約 0.1g 樣本，加入 1ml 提取液一，冰浴勻漿后超聲破碎（冰浴，200W，破碎3s，間歇 7s，總時間 1min），然后 4℃，8000g 離心 10min，取上清測定。

②胞漿和葉綠體FDA 酶的分離：按照植物組織質量（g）：提取液體積(ml)為 1：5～10 的比例（建議稱取約 0.1g 樣本，加入 1ml 提取液一），冰浴勻漿后于 4℃，200g 離心 5min，棄沉淀，取上清在 4℃，8000g離心 10min，取上清用于測定胞漿 FDA 酶活性，取沉淀加 1ml 提取液二，震蕩溶解后超聲破碎（冰浴， 200W，破碎 3s，間歇 7s，總時間 1min），然后 4℃，8000g 離心 10min，取上清測定葉綠體中 FDA 酶活性。

建議測定總FDA 酶活性，按照步驟①提取粗酶液，若需要分別測定胞漿和葉綠體中的 FDA，則按照步驟②提取粗酶液。

測定操作：

分光光度計預熱 30min，調節波長至 340nm，蒸餾水調零。

取 1ml 石英比色皿，依次加入 500μl 試劑一，100μl 試劑二，100μl 試劑三，100μl 試劑四，100μl 試劑五，100μl 粗酶液，充分混勻，記錄 340nm 處 10s 的吸光值A1 和 310s 的吸光值A2，△A=A1-A2

計算公式：

按照樣本蛋白濃度計算

酶活單位定義：每毫克組織蛋白每分鐘消耗 1 nmol 的NADH 定義為一個酶活力單位。

FDA（nmol/min /mg prot）= ΔA÷（ε×d）×V 反總÷(V 樣×Cpr) ÷T=321.54×ΔA÷Cpr

按照樣本質量計算

酶活單位定義：每克組織每分消耗 1 nmol 的NADH 定義為一個酶活力單位。

FDA（nmol/min /g 鮮重）= ΔA÷（ε×d）×V 反總÷(W ×V 樣÷V 樣總) ÷T=321.54×ΔA÷W

按照細胞數量計算

酶活單位定義：每 104 個細胞每分鐘消耗 1 nmol 的NADH 定義為一個酶活力單位。

FDA（nmol/min /104 cell）= ΔA÷（ε×d）×V 反總÷(V 樣×細胞數量÷V 樣總) ÷T

= 321.54×ΔA÷細胞數量

按照液體體積計算

酶活單位定義：每毫升液體每分鐘消耗 1 nmol 的NADH 定義為一個酶活力單位。

FDA（nmol/min /ml）= ΔA÷（ε×d）×V 反總÷V 樣÷T=321.54×ΔA

V 反總：反應體系總體積，1ml；ε：NADH 摩爾消光系數，6.22×103 L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm； V 樣：加入樣本體積，0.1ml；V 樣總：加入提取液體積，1ml；T：反應時間，5 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本質量，g

果糖1,6-二磷酸醛縮酶試劑盒 光合系列