線粒體轉氫酶-2（TH-2）試劑盒說明書

分光光度法 50 管/48 樣

線粒體轉氫酶-2 TH-2試劑盒 氧化磷酸化

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

TH 位于線粒體的內膜上，又稱為線粒體復合體六，催化NADH+NADP⁺和NAD⁺+NADPH 相互轉化，調節線粒體NAD(H)和NADP(H)平衡。把逆向反應稱為 TH-2，催化 NADPH 和NAD⁺生成NADP⁺和NADH。

測定原理：

NADH 和NADPH 均在 340nm 有特征吸收，因此TH 催化的轉氫反應不能導致 340nm 吸光度發生變化。用人工合成底物 3-乙酰吡啶腺嘌呤二核苷酸（APAD⁺）替代 NAD⁺，TH-2 催化APAD⁺還原生成APADH， APADH 在 375nm 有特征光吸收，測定 375nm 光吸收的增加速率，來計算 TH-2 活性。

試劑的組成和配制：

需自備的儀器和用品：

可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1mL 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

樣本的前處理：

組織、細菌或細胞中胞漿蛋白與線粒體蛋白的分離：

1、準確稱取 0.1g 組織或收集 500 萬細菌或細胞，加入 1mL 試劑一，用冰浴勻漿器或研缽勻漿。

2、將勻漿 600g，4℃離心 5min。

3、棄沉淀，將上清液移至另一離心管中，11100g，4℃離心 10min。

4、上清液即為除去線粒體的胞漿蛋白，可用于測定從線粒體泄漏的TH-2（此步可選做）。

5、步驟 4 中的沉淀即為線粒體，加入 500uL 試劑二，超聲波破碎（冰浴，功率 20％或 200W，超聲3s，間隔 10 秒，重復 30 次），用于TH-2 活性測定。

測定步驟：

1、 分光光度計預熱 30min 以上，調節波長至 375nm，蒸餾水調零。

2、 樣本測定

工作液的配制：臨用前取試劑三、試劑四和試劑五各一支，將試劑四、五轉移到試劑三中混合溶解，置于 37℃（哺乳動物）或 25℃（其它物種）水浴 5min；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

在 1mL 玻璃比色皿中加入 100μL 樣本和 1000μL 工作液，混勻，立即記錄 375nm 處初始吸光值A1 和 10min 后的吸光值A2，計算ΔA=A2-A1。

TH-2 活性計算：

按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：每mg 組織蛋白每分鐘產生 1 nmol APADH 定義為一個酶活性單位。

TH-2 活性（nmol/min /mg prot）=[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(V 樣×Cpr)÷T=164×ΔA÷Cpr

按樣本鮮重計算

單位的定義：每g 組織每分鐘產生 1 nmol APADH 定義為一個酶活性單位。

TH-2 活性（nmol/min/g 鮮重）=[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(W× V 樣÷V 樣總) ÷T=82×ΔA÷W

按細菌或細胞密度計算

單位的定義：每 1 萬個細菌或細胞每分鐘產生 1 nmol APADH 定義為一個酶活性單位。

TH-2 活性（nmol/min/104 cell）=[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(500×V 樣÷V 樣總) ÷T=0.164×ΔA

V 反總：反應體系總體積，1.1×10-3L；ε：APADH 摩爾消光系數，6.7×103 L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V 樣：加入樣本體積，0.1mL；V 樣總：加入提取液體積，0.5mL；T：反應時間，10 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；500：細菌或細胞總數，500 萬。

線粒體轉氫酶-2 TH-2試劑盒 氧化磷酸化