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免疫熒光實驗操作指南

閱讀:1504          發布時間:2021-7-21

免疫熒光技術(Immunofluorescence technique )又稱熒光抗體技術,是標記免疫技術中發展*早的一種。它是在免疫學、生物化學和顯微鏡技術的基礎上建立起來的一項技術。很早以來就有一些學者試圖將抗體分子與一些示蹤物質結合,利用抗原抗體反應進行組織或細胞內抗原物質的定位。免疫熒光實驗操作步驟:

一、固定和透化

1.   在培養板中將已爬好細胞的蓋玻片用1 × PBS浸洗3次,每次3 min。

2.   用4%的多聚甲醛固定爬片15 min,1 × PBS浸洗玻片3次,每次3 min。

3.   0.5% Triton X-100(1× PBS配制 )室溫通透細胞15 min(細胞膜上表達的抗原省略此步驟), 1 × PBS浸洗玻片3次,每次3min。

二、封閉

4. 吸水紙吸干1 ×PBS,在玻片上滴加5%的正常血清(與二抗種屬來源一致或相似),室溫封閉1 h。

三、抗體孵育

5.    吸水紙吸掉封閉液,不洗,每張玻片滴加足夠量的稀釋好的一抗并放入濕盒,4 ℃孵育過夜。

6. 加熒光二抗: PBST 浸洗爬片3次,每次3 min,吸水紙吸干爬片上多余液體后滴加稀釋好的熒光二抗,濕盒中37℃孵育1 h,PBST浸洗爬片3次,每次3 min。

注意:從加熒光二抗起,后面所有操作步驟都盡量在較暗處進行。

四、固定拍照

7.    復染核:滴加DAPI避光孵育5 min,對標本進行染核,PBST 5 min×4次洗去多余的DAPI。

8.    用吸水紙吸干爬片上的液體,用含抗熒光淬滅劑的封片液封片,在熒光顯微鏡下觀察采集圖像。


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