一、試劑盒說明
在正常細胞中，磷脂酰絲氨酸（PS）只分布在細胞膜脂質雙層的內側，而在細胞凋亡早期，細胞膜中的磷脂酰絲氨酸（PS）由脂膜內側翻向外側。Annexin V是一種分子量為35~36kD的Ca2+依賴性磷脂結合蛋白，與磷脂酰絲氨酸有高度親和力，故可通過細胞外側暴露的磷脂酰絲氨酸與凋亡早期細胞的胞膜結合。因此Annexin V被作為檢測細胞早期凋亡的靈敏指標之一。將Annexin V進行熒光素（EGFP、FITC）標記，以標記了的Annexin V作為熒光探針，利用熒光顯微鏡或流式細胞儀可檢測細胞凋亡的發生。
碘化丙啶（Propidium Iodide, PI）是一種核酸染料，它不能透過完整的細胞膜，但對凋亡中晚期的細胞和死細胞，PI能夠透過細胞膜而使細胞核染紅。因此將Annexin V與PI匹配使用，就可以將處于不同凋亡時期的細胞區分開來。
本試劑盒可應用于培養細胞凋亡檢測（不*用于檢測組織樣本）。
二、試劑盒組份
| 組份 | Cat: KGA105 （10 assays） | Cat: KGA106 （20 assays） | Cat: KGA107 （50 assays） | Cat: KGA108 （100 assays） | 儲存條件 |
| AnnexinV-FITC | 50μL | 100μL | 250μL | 500μL | 4℃避光 |
| Propidium Iodide | 50μL | 100μL | 250μL | 500μL | 4℃避光 |
| Binding Buffer | 5 mL | 10.0 mL | 25 mL | 50 mL | 4℃ |
三、試劑盒以外自備儀器和試劑
流式細胞儀或熒光顯微鏡、低速離心機、微量移液器
1.5m L Microtube、載玻片、蓋玻片（熒光顯微鏡觀察需用）、PBS、不含EDTA的胰酶消化液
四、使用注意事項
1． 微量試劑取用前請離心集液。
2． Annexin V-FITC，Propidium Iodide （PI）避光保存及使用。
3． Propidium Iodide （PI）有毒，操作時要戴手套。
4． 本試劑盒適用于檢測活細胞，流式細胞儀檢測時，細胞數量不以應低于1×105，，不*用于檢測組織樣本。
5． *使用懸浮培養細胞。如果是貼壁細胞，需用不含EDTA的胰酶消化，如消化不當，可能引起假陽性，而用細胞刮子會造成細胞粘連成團，而影響檢測。可將胰酶消化后細胞的保存在含2%BSA的PBS中，防止進一步的損傷。
6． 細胞固定后可能導致熒光的淬滅，請不要固定樣品。
7． 因檢測細胞的類型、凋亡誘導劑種類、使用的檢測儀器不同，因而流式檢測的熒光補償也不同，因此建議每次檢測均需使用未經凋亡誘導處理的細胞作為對照，進行熒光補償的調節。
五、操作方法
1． 懸浮細胞離心（2000rpm離心5min）收集；貼壁細胞用不含EDTA的胰酶消化收集（注：胰酶消化時間不易過長，否則容易引起假陽性）；
2． 用PBS洗滌細胞二次（2000rpm離心5min）收集1~5×105細胞；
3． 加入500μL的Binding Buffer懸浮細胞；
4． 加入5μL Annexin V-FITC混勻后，加入5 μL Propidium Iodide，混勻；
5． 室溫、避光、反應5～15min；
6． 請在1 hour內，進行下述熒光顯微鏡或流式細胞儀的觀察和檢測。
A． 熒光顯微鏡觀察
1． 滴一滴上述染色后的細胞懸液于載玻片上，并用蓋玻片蓋上細胞；
2． 對于貼壁細胞來說，也可直接用蓋玻片來培養細胞并誘導細胞凋亡；
（1） 將細胞于蓋玻片上生長，用適當的凋亡誘導劑誘導細胞凋亡，并設立陰性對照組；
（2） 用PBS洗滌細胞兩次；
（3） 在500μL 的Binding Buffer中加入5μL Annexin V-FITC， 5 μL Propidium Iodide，混勻；
（4） 將上述溶液滴加于蓋玻片表面，使蓋玻片表面均勻覆蓋；
（5） 避光、室溫反應5 min。
3． 將蓋玻片倒置于載玻片上，于熒光顯微鏡下、雙色濾光片（FITC和羅丹明）觀察
Annexin V-FITC熒光信號呈綠色，PI熒光信號呈紅色。
B． 流式細胞儀分析
用流式細胞儀檢測，激發波長Ex=488 nm; 發射波長Em=530 nm。
Annexin V-FITC的綠色熒光通過FITC通道（FL1）檢測；PI紅色熒光通過PI通道（FL2或FL3）檢測，建議使用FL3。
熒光補償調節：使用未經凋亡誘導處理的正常細胞，作為對照進行熒光補償調節去除光譜重疊和設定十字門的位置。
六、實驗范例
用凋亡誘導劑誘導P388細胞凋亡，在37oC，5%CO2培養箱培養4～6h后，參照說明書的操作方法進行檢測，經流式細胞儀檢測結果見下圖。
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