一、器官芯片的基本組成：
1.芯片結構
微流控控系統：包含微通道、腔室和閥門，用于細胞培養和流體控制。
細胞培養區域：通常由水凝膠、基質膠或納米材料構成，模擬器官的三維微環境。
傳感器與檢測模塊：集成電極、光學探頭或生化傳感器，實時監測細胞活性、代謝產物等。
2.配套設備
注射泵或壓力控制器：用于精確調控流體流動。
顯微鏡或成像系統：觀察細胞形態和動態變化。
數據采集與分析軟件：記錄實驗參數（如流速、溫度、pH值等）。
二、器官芯片使用前準備：
1.芯片檢查與預處理
檢查芯片是否完好，無裂紋或污染。
用70%乙醇或無菌水清洗芯片表面，紫外照射滅菌30分鐘。
若需包被基底膜，按說明書處理培養區域。
2.細胞準備
選擇符合實驗需求的細胞類型。
調整細胞密度至適宜濃度，懸浮于培養基中。
若需共培養，提前混合不同細胞類型。
3.培養基與試劑
使用無菌、無酚紅的培養基，并添加生長因子或激素。
預溫培養基至37℃，避免溫度波動影響細胞活性。
三、器官芯片操作流程：
1. 細胞接種
加載細胞：
通過注射泵或移液槍將細胞懸液緩慢注入芯片的腔室，避免產生氣泡。
對于動態灌流模型，需確保細胞在微通道中均勻分布。
固化細胞：
若使用水凝膠，需通過離子交換或溫度控制使其交聯。
靜置30-60分鐘，讓細胞貼壁。
2. 流體灌注與參數設置
連接流體系統：
將芯片進出口與注射泵、儲液器連接，確保密封性。
設置流速，模擬毛細血管血流速度。
環境控制：
將芯片置于37℃、5% CO2培養箱中，或使用恒溫加熱板維持溫度。
定期更換儲液器中的新鮮培養基，避免代謝廢物積累。
3. 功能驗證與實驗干預
生理功能檢測：
通過傳感器監測細胞代謝。
用熒光染料評估細胞活力，或用TUNEL染色檢測凋亡。
實驗干預：
添加藥物、毒素或病原體，觀察器官反應。
調整流速或施加機械刺激（如剪切力），模擬病理狀態。
4. 數據記錄與分析
實時監測：
使用成像系統記錄細胞形態變化。
通過電化學傳感器檢測離子濃度。
樣本采集：
從出口收集灌流液，用于ELISA、質譜或測序分析。
固定芯片后切片，進行免疫熒光染色或RNA提取。
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